Determinazione del contenuto di Perossidasi nel Latte
La persistenza dell'attività della latto-perossidasi nel latte pastorizzato fornisce una buona indicazione della qualità di un prodotto, poiché solo un latte crudo di buona qualità microbiologica può essere sottoposto a un leggero processo di pastorizzazione per non inattivare questo enzima. I metodi tradizionali sono spesso qualitativi (presenti / non presenti) e quindi in grado di indicare solo se il processo termico è stato eseguito. La quantificazione della latto-perossidasi nel latte pastorizzato consente invece di determinare la qualità nutrizionale del latte. Un valore più elevato di perossidasi significa che il latte ha conservato le sue caratteristiche originali.
I metodi tradizionali per la determinazione della perossidasi sono spesso di tipo qualitativo (presente/assente) e danno informazioni solo sull’avvenuto trattamento termico. Il metodo CDR FoodLab^® per l’analisi della perossidasi nel latte pastorizzato è quantitativo e quindi permette di valutare la qualità nutrizionale del latte: più alto è il valore della perossidasi meno il latte ha subito alterazioni dalle sue caratteristiche originarie.

METODICA:
Analisi di tipo End Point.
Tempo di analisi: 10 minuti.
Sono possibili sessioni di analisi con più campioni fino ad un massimo di 16 test per CDR FoodLab^® e di 3 test per CDR FoodLab^® Junior.

PRINCIPIO DEL TEST
In presenza di un indicatore e di perossido di idrogeno, la perossidasi del latte catalizza formando un composto rosso con un'intensità direttamente proporzionale alla concentrazione di perossidasi nel campione misurata a 505 nm. Il metodo innovativo di CDR consente di quantificare facilmente e rapidamente la quantità di latto-perossidasi nel latte.

Step 1/13

Aprire il flacone del liofilo R1a, senza disperderne il contenuto. Aggiungere 2 ml di acqua distillata. Chiudere e agitare bene per miscelare. Sostituire il tappo di chiusura con il tappo a tenuta che si trova in dotazione.

Step 2/13

Prelevare con la pipetta 50 µl di R1a

Step 3/13

Aggiungere 50 µl di R1a nella cuvetta contenente il reagente R1 senza toccare con il puntale il liquido al suo interno. In caso di contaminazione sostituire il puntale.

Step 4/13

Omogeneizzare il campione prima del prelievo.

Step 5/13

Avvinare la pipetta e prelevare con essa 5 µl di campione. Per avvinare la pipetta: prelevare il campione con la pipetta e rilasciarlo su carta assorbente; ripetere l'operazione 2-3 volte. Pulire bene la parte esterna del puntale della pipetta con carta assorbente, evitando il contatto tra l'estremità del puntale e la carta assorbente. Inserire il campione nella cuvetta e miscelare.

Step 6/13

Agitare delicatamente la cuvetta 2-3 volte.

Step 7/13

Inserire la cuvetta in una cella di incubazione ed avviare il timer premendo sull'icona.

Step 8/13

Agitare delicatamente la cuvetta 2-3 volte. Inserire la cuvetta nella cella indicata dalla luce blu e premere LEGGI.

Step 9/13

Prelevare 50 µL di R2.

Step 10/13

Aggiungere 50 µl di R2 nella cuvetta senza toccare con il puntale il liquido, R1 + R1a + campione, al suo interno. In caso di contaminazione sostituire il puntale.

Step 11/13

Agitare delicatamente la cuvetta 2-3 volte

Step 12/13

Inserire la cuvetta in una cella di incubazione e avviare il timer premendo sull'icona.

Step 13/13

Agitare delicatamente la cuvetta 2-3 volte. Inserire la cuvetta nella cella indicata dalla luce blu e premere LEGGI per avviare la lettura fotometrica.